Отпечаток гриба не получается. Грибы спор отпечаток. Время на выполнение эксперимента

13.03.202127.05.2017

-стерильный споровый отпечаток
-баян на 10 кубов с 8 кубами кипячёной дистиллированной воды (перед этим пару раз набрала и дала постоять в нём кипячёной воде)
-бутылка горилки (так как спирт нигде не нашла)
-хирургическая маска и перчатки
-бумажные салфетки
-чистая рюмка
-дезинфектор для холодильников (био-спирт)

Всё это было куплено или найдено заранее.
Включила духовку прогреваться, а также все 4 газовые комфорки на плите. Стало жарко. Крыжка духовки открывается не до горизонтального положения, а под очень большим углом и при этом предательски скрепит, поэтому было решено выдвинуть немного противень, который лежал внутри духовки и делать всё на нём.
Разбрызгиваю для начала дезинфектор, протираю им поверхности, а также рабочую поверхность горилкой. Из-за тёплого воздуха все микробы должны улететь вверх.
Наконец всё готово, помещение более-менее стерильно. Надеваю хирургическую маску и перчатки. Такое ощущение, что я делаю сложную хирургическую операцию.
Достаю из зиплока за край споровый отпечаток и чуть не роняю. Прокаливаю иглу баяна на газу и смачиваю в пропитанной горилкой салфетке. До этого чуть ранее протёрла рюмку горилкой. Рюмка стоит на противине. Пока прокаливала иглу, рюмка высыхает. Или не высыхает. Должна высохнуть, но я в этот момент ничего не соображаю. Всё происходит как в тумане.
И вот наконец начинаю соскабливать споры с отпечатка иглой шприца в рюмку. Точно не знала, сколько надо соскребать, но получилось где-то 1,5*2 см. По-моему этого было мало, не знаю. Вся процедура соскребания заняла у меня около минуты, я старалась торопиться, чтобы споры не заразились, и соскребать тщательно, чтобы было побольше спор.
Наконец, я убираю отпечаток обратно в зиплок, впрыскиваю примерно половину воды из баяна в рюмку, перемешиваю то что в рюмке и вбираю обратно в шприц. Но в рюмке ещё остаётся много спор. Тогда я повторяю эту операцию. Теперь практически все споры находятся в баяне.
Снова прокаливаю иглу, обрабатываю горилкой, надеваю колпачёк.
Запихиваю шприц со спорами в зиплок и убираю.
А, да, перед тем как убрать устроила небольшую фотосессию 🙂
Всё, можно спокойно идти спать.

grow-cubensis.livejournal.com

Записки испытателя природы

Удивительная коллекция

Понятно, как собирают растения – их засушивают в расправленном состоянии между листами бумаги. Насекомых тоже сушат, наколов на булавки. А вот как сохранить на память грибы? Засушить их? Можно, но тогда гриб совершенно теряет характерные внешние особенности, сморщивается и сжимается. Отличить их друг от друга будет проблематично. Когда-то в детстве я прочитал описание увлекательного способа исследования грибов – изготовление спорового отпечатка. Что это такое – споры?

Все мы видели, что у грибов изнутри шляпка состоит из пластиночек или трубочек. Биологи так и разграничили многие виды грибов – на пластинчатые (шампиньоны, сыроежки, опята, поганки) и трубчатые (подберезовик, белый гриб, маслята). Микологи (ученые, изучающие грибы) то, что мы считаем грибом, называют плодовым телом. Главное его предназначение состоит в образовании огромного количества мелких и легких спор, которые разлетаются на большое расстояние. Активно передвигаться гриб не может, поэтому споры играют роль своеобразных агентов – захватчиков пространства. Споры разных видов грибов отличаются по форме и цвету.

Именно это и позволяет увидеть коллекция споровых отпечатков. В качестве пробы можно взять даже шампиньоны из магазина. Главное, чтобы они были не совсем малышами, а довольно крупными особями J Пластинки у шампиньонов закрыты своеобразной пленкой, вуалью – ее нужно убрать.

После этого положим шляпку плашмя на лист бумаги. Споры с пластинок будут падать точно вниз, постепенно накапливаясь. Через день можно осторожно снять шляпку и посмотреть результат.

Шампиньон и его споровый отпечаток (однодневный). Споры рыжевато-коричневые. Видно, как «дозрел» гриб – шляпка ссохлась и покрылась морщинами.

Осторожность необходима дл того, чтобы получившийся отпечаток не смазался. Ну вот: перед нами забавная картинка спорового отпечатка шампиньона. Чтобы споры не разлетелись, можно побрызгать сверху на лист лаком для волос – он склеит и закрепит отпечаток.

Вот и все! Теперь достаточно записать на листок – что за гриб, где, когда и кем он был собран – и положить в файл. Ваша коллекция поместится в обычной папке для бумаг и займет совсем немного места. А радости и интересных открытий сулит довольно много – редко встретишь человека с такой удивительной коллекцией!

Posted on Feb. 8th, 2013 at 05:11 pm | Link | Leave a comment | Share

evrika-micro.livejournal.com

Опыт «Отпечаток спор»

Поиск по сайту

Представляем Вашему вниманию интересные факты о жирафах ! Узнайте об их особенностях, сколько у них желудков, какой у них язык и многое другое.

Галюциногенные виды грибов

Галюциногенные грибы относятся также как и около 30% всех известных видов грибов к классу основных грибов (Basidomycetes), точнее к отряду пластинчатых и трубчатых грибов (Agaricales), в который входят почти 3500 распространеныых в Европе видов — практически все съедобные грибы, но также и большинство ядовитых грибов. Все они отличаются более или менее выраженными плодовыми телами с ножкой и шляпкой. Галюциногенные грибы относятся только к 3 из 15 семейств в этом отряде:
1.Чернильные грибы (Coprinaceae)
2.Чешуйчатые грибы (Strophariaceae)
3.Поганки бледные (Amanitaceae)

Из узелковых уплотнений грибницы (Primordia) постепенно развиваюися плодовые тела с ножкой и шляпкой. В самой ранней стадии плодовое тело окружено тонкой внешней оболочкой (Velum universale), которая рвется в ходе роста. Иногда (напр., у поганок бледных) остатки этой внешней оболочки находятся на основании ножки и как отмывающаяся чешуя на верхней стороне шляпки. Вторая оболочка (Velum partiale) окружает шляпку в молодости. Только когда на стадии более позднего развития эта кожица разрывается, на нижней части шляпки виден спороносный слой. Остатки внутренней оболочки часто образуют вокруг ножки кольцо (манжета или вуаль), иногда на краю шляпки остаются висеть клочки оболочки.

Определение вида грибов

При определении различных видов грибов важно суметь точно распознать отличительные признаки. Поэтому здесь на рисунках представлены важнейшие возможные характеристики.

A.шляпка
-остатки вуали
-спороносный слой
-кольцо
-ножка
-ножны
B.Молодой гриб перед раскрытием шляпки.
C.Молодой вуальник (Cortinarius)
-верхняя часть шляпки
-спороносный слой
-вуаль (Cortina)
-ножка
-шишковатое основание ножки

Ровно выпуклая шляпка;
-плоская шляпка;
-с тупой выпуклостью;
-с заостренным выступом;
-с углублением в центре;
-с глубокой воронкой;
-конусообразная;
-в форме колокола и с глубокими, до центра желобками.

Нижняя часть ножки с полосками в форме кольца;
-нижняя часть расширена (утолщена) в форме клубня с кольцом;
-ножка удлинена в форме веретена и укореняется в земле;
-ножка расширена книзу в форме шара;
-суживается в форме свеклы;
с высокими кожистыми ножнами;
-с подрезанным клубнем.

Формы спороносного слоя

Шляпка плоская, с рубчиками спороносный слой, простирающийся вниз
-шляпка плоская, выпуклая спороносный слой sinuat
-шляпка в форме воронки спороносный слой глубоко или широко сбегающий вниз
-шляпка плоская, с углублением спороносный слой adnat, с зубчиком —-простирающийся вниз
-шляпка выпуклая спороносный слой emarginat
-шляпка в форме зонта спороносный слой adnat
-шляпка в форме колокола спороносный слой adnat
-шляпка конусообразная спороносный слой adnex
-шляпка плоская, выпуклая или выгнутая спороносный слой свободный

Изготовление отпечатка спор

Важным вспомогательным средством при распознавании различных грибов является исследование спор. Очень редко имеется возможность рассмотреть их под микроскопом на предмет их формы. о даже простой отпечаток спор помогает отличить грибы хотя бы от опасных видов семейства Amanita и точно определить вид. Культуре грибов из спор должно предшествовать получение спор посредстовм отпечатка спор (см. Культура грибов, стр. 30). По возможности большая шляпка отделяется от ножки и кладется спороносным слоем вниз на лист белой, блестящей бумаги. Чтобы исключить перемещений, влияния воздушного потока и нежелательных контаминантов (зародыши), все это укрывается стеклянной емкостью (стаканом, чашкой Петри). Шляпка остается лежать нетронутой 24 часа. В это время споры падают из спороносного слоя. Затем очень осторожно удаляют (чтобы не стереть) сначала стакан, потом шляпку. Hа бумаге должен быть виден отпечаток. Если споры исследуются под микроскопом, отпечаток спор надо сделать на стеклышке (носитель объекта). Если ожидаются белые споры (бледные поганки), для контраста берут темный лист бумаги.

ГАЛЮЦИHОГЕHHЫЕ ВИДЫ ГРИБОВ

Двенадцать наиболее часто встречающихся на наших широтах психоактивных видов грибов можно разделить на две группы по биологически активным веществам:

1.Грибы, содержащие псилоцибин и псилоцин. Основное биологически активное вещество — псилоцибин и псилоцин, очень часто еще химически подобные вещества Baecystin и Norbaeocystin, все вместе — соединения триптамина (также как буффотенин и серотонин). Как все дериваты триптамина, псилоцибин и псилоцин также схожи с ЛСД, все они относятся к соединениям индола.
2.Группа Amanita Грибы, котрые содержат в качестве действенного принципа иботеновую кислоту, мускимол, мусказон и гиоскиамин. К сожалению, в этой группе грибов встречается опасное биологически активное вещество мускарин.

Грибы спор отпечаток

Как сеять грибы.

Готовится грибная «рассада» — просто. Берётся шляпка уже перезревшего гриба (белый или подберезовик). Перемалывается на обычной ручной мясорубке. Кладётся в бутыль с водой. Дальше идёт способ «пробуждения» спор грибов.

«Чтобы пробудиться споре в природе — ей нужно пройти по кишечнику зайчика или ежика. Какая там на эту спору воздействует среда в этом кишечнике? Крайне агрессивная по отношению к пище — она, эта среда, пищу эту расщепляет. Для воссоздания такой среды в домашних условиях кладётся на литровую бутыль пару чайных ложек французских дрожжей.

Стоит такая смесь примерно месяц. Внизу бутылки оседает мякоть грибов. Её надо убрать. А всё, что сверху — слить в отдельную посудину. Всё — посевной раствор готов. Нужно учитывать концентрацию — в одном грибе — не миллион, и даже не миллиард спор. А биллион.

И поэтому не нужно поливать раствором такой концентрации. Берётся пропорция — стакан готового раствора со спорами из бутылки на бочку воды. Пластиковую, двухсот литровую бочку. И поливаются из обычной садовой лейки желательно около ТЕХ видов деревьев, около которых и был найден гриб.

Если подберёзовик был найден у берёзы, то и лить рядом с берёзами. Если белый — около дуба (а и такое бывает) — то и лить около дуба. Здесь дело в том, что и подберёзовик и белый гриб всегда находятся в тесной связи с корнями деревьев. И споры «помнят» и «умеют» выстраивать отношения с теми видами деревьев, около которых росла их мама. И можно «сеять». Хоть — на даче. Хоть в соседнем лесу. Где душа пожелает

Приготовление спорового отпечатка

Для изготовления спорового отпечатка, лучше всего брать грибы со второй, или с третьей волны плодоношения. Их как правило, вырастает значительно меньше чем в первой волне, и поэтому не нужно мучаться выбором, оставить ли собранные грибы для употребления, или использовать их для получения спор. К тому же, как показывает практика, именно у грибов со второй и третьей волны, получаются самые жирные отпечатки.
Выбирать, следует крупные грибы с более темной, чем у остальных грибов шляпкой. Грибы с темной шляпкой, как правило, производят больше спор, чем остальные. А выбирая крупные экземпляры, вы тем самым отбираете с потока самые полноценные, здоровые грибы. Помните, что отбирая грибы по тому, или иному признаку, вы производите селекцию, в результате которой, последующие поколения грибов могут иметь все те признаки, по которым производился отбор.
Шляпка гриба, к моменту сбору спор должна полностью раскрыться, и часть спор к этому времени, уже может начать высыпаться. Гриб, продолжает производить споры довольно долгое время (2-4 дня), поэтому можно не бояться, что высыпавшиеся споры, повлияют на качество отпечатка. Напротив, начавшие высыпаться из шляпки споры, являются явным подтверждением того, что гриб начал производить споры, и что споровый отпечаток удастся получить в любом случае.
Все операции по приготовлению спорового отпечатка, необходимо проводить в стерильных условиях. Для этого необходимо обработать помещение бактерицидной лампой, или воспользоваться стерильным боксом.
Приготовить споровый отпечаток, можно практически на всем, что угодно –
на всем, что имеет плоскую поверхность, и с чем вам потом будет удобнее работать, и что будет удобнее хранить.
Чаще всего для этих целей, рекомендуют использовать кусочек плотной бумаги, фольги, или стекла.
Удобнее всего, делать отпечаток на плотной бумаге (например, на открытке) т.к. стекло или фольга не всегда подходят для этих целей. Например, стекло вы не сможете отправить по почте, а фольга, очень часто рвется во время инокуляции, при контакте с инокуляционной петлей.

Процедура изготовления спорового отпечатка сводится к следующему: Стерильный кусочек плотной бумаги (или чего-либо подобного), размером чуть больше шляпки гриба, укладывают в стерильную чашку Петри, затем берут гриб, используя стерильные ножницы (или скальпель) отрезают у него шляпку как можно ближе к спороносному слою (гименофору), и укладывают шляпку на бумагу спороносным слоем вниз. Затем чашку Петри закрывают, и убирают ее на сутки, куда-нибудь в темное место. За сутки, (ждать дольше не имеет особого смысла, т.к. созревшие споры, как правило, успевают высыпаться за это время, а новые споры гриб уже не производит) миллионы спор высыпаются из отрезанной шляпки образуя на бумаге пятно темно-фиолетового цвета (споровый отпечаток).
Цвет спорового отпечатка, всегда одинаковый для каждого вида грибов, и является важным признаком при его определении.
После того как споры высыпались, чашку Петри открывают, извлекают из нее шляпку гриба, а кусочек бумаги со споровым отпечатком, стерильным пинцетом помещают в подходящий по размеру, стерильный пакетик с застежкой (зип-локом) для его хранения.
Все операции по переносу спорового отпечатка из чашки Петри в пакетик, также, необходимо проводить в стерильных условиях.

Чтобы обеспечить стерильность пакетика, его необходимо протереть спиртом изнутри и снаружи, и позволить спирту испариться (если этого не сделать, остаткам спирта будет некуда деться в закрытом пакетике, и часть спор может погибнуть из-за контакта со спиртом). Стерильность чашки Петри, также достигается путем протирания ее спиртом, изнутри и снаружи. А кусочки бумаги, которые будут использоваться для приготовления отпечатка, удобнее всего стерилизовать в скороварке (или кастрюле), предварительно нарезав и поместив их в банку с закручивающейся крышкой. Стерилизацию проводят в течении 30-60 мин., после чего позволяют банке остыть до комнатной температуры. Стерильные кусочки бумаги, извлекают из банки стерильным пинцетом, непосредственно перед тем, как их использовать. Все инструменты перед проведением работ, также следует обрабатывать спиртом.

Вместо чашки Петри, можно использовать невысокую банку с закручивающейся крышкой. В этом случае, не следует герметично закрывать крышку – от этого, в банке создается повышенная влажность, в результате которой, споры прилипают к спороносным пластинкам и практически не высыпаются, или высыпаются очень плохо, образуя крайне бледные отпечатки.

Для приготовления отпечатка также, можно воспользоваться и «классической» технологией, используя вместо чашки Петри (или банки с закручивающейся крышкой) блюдце и рюмку. Но в этом случае, слишком велика вероятность нарушения стерильности отпечатка, из-за того, что уровень рюмки находится на одном уровне с бумагой, на которую высыпаются споры. К тому же, рюмка на блюдце – конструкция довольно неустойчивая, и во время переноса с места на место, рюмка очень часто сдвигается, или падает.

кое что уточню - в норме для получения жирного отпечатка требуется 12-24 часа. для того чтобы гриб охотнее сыпал споры за 15-20 минут до срезания шляпки обрызгиваются водой из пульверизатора. так же имеет смысл оставлять зазор в чашечке для испарения влаги со шляпки.
кстати стерильный принт - фантастика и парадокс.
хотя бы потому что шляпка гриба - умирающая органика со всем ее зоопарком

Руководство по выращиванию грибочков.

Москва 2004

1 часть

Набор гровера. Инструменты, препараты т.д. 3

Изготовление отпечатка 4

Изготовление споровой взвеси. 5

Подготовка банок. 6

Подготовка субстрата. 10

Инокуляция субстрата.14

Уход за банками.16

Приготовление покровного грунта. 21

Покров. Подготовка парника. 27

Плодоношение. 29

2 часть

Выращивание мицелия в жидкой среде. 33

Набор гровера. Инструменты, препараты и т.д.

Всё что нужно для выращивания грибочков в соответствии с изложенной далее инструкцией.

Название инструмента	Кол-во	Отметка о наличии	Предполагаемое место покупки
Банка 720-800 мл. с накручивающейся крышкой	4 шт.		Хоз.маг. Или купить огурцов и закусить ими водку
Крышечка от пластиковой бутылки	1 шт.
Простой карандаш	1 шт.
Нож, ножницы	1 шт.
Отвертка для загибания краев дырки для клапана	1 шт.
Бинт, шириной 12 см.	1 шт.
Вата	1 комочек.
Зерно пшеницы	0.5 литра		Мир сои на 6-й парковой
Кастрюля для варки зерна	1 шт.
Столовая ложка	1 шт.
Скороварка	1 шт.
Спирт	5-10 пузырь.
Шприц 10 мл.	5 шт.		Аптека
игла для шприца	10 шт.		Аптека
Зажигалка Criket	3 шт.		лоточки табак
Перчатки резиновые	10 пар		Аптека
Вермикулит	2 пакета		цветы на 16-й парковой
Торф	Вермикулит Х 2		цветы на 16-й парковой
Контейнер для продуктов 1.1 л.	3 шт.		Хоз.маг.
Фольга	2 рулона		оптовка
Мелкий керамзит			цветы на 16-й парковой
Пищевая пленка	1 рулон		оптовка
Любое лекарство для капельницы в бутылочках 400 мл.	5 бутылочек		Аптека
Фруктоза	100 гр.		Мир сои на 6-й парковой
Чашка петри	10 шт.
Мерный стакан для жидкостей и сухих продуктов (зерна)	0.5 л.		лабораторная техника на 3-й парковой
Террариум	1 шт.		Зоо магазин на 3-й, 5-й, 9-й или 13-й парковой

Предполагается изготовление своего отпечатка, при покупке оного - следующую главу можно пропустить.

Изготовление отпечатка.

Необходимо.

Гриб!!!
Бритва (нож).
Спирт.
Пинцет.
Чашка Петри (по кол-ву грибов).

Процесс.

Продезинфицировать чашку Петри, пинцет, бритву.
Держась за ножку, шляпкой вниз, отделить шляпку от ножки.
Пинцетом положить шляпку в чашку Петри, спорами вниз.
Закрыть, оставить на 24 часа.
Изъять шляпку, закрыть чашку.

Изготовление споровой взвеси.

Необходимо.

Отпечаток в чашке Петри.
Шприц.
Спирт.
Пакетик с зип-локом.
Кастрюлька для варки зерна.

Процесс.

Спиртом продезинфицировать пакет.
Вскипятить воду в кастрюльке.
Набрать в шприц.
Подождать пару минут.
Вылить из шприца в сторону.
Набрать снова полный 10 мл. шприц.
Убрать шприц в пакет, отложить остывать.
Как в пункте 3,4 продезинфицировать еще 2 шприца.
После остывания, вылить всю воду из шприца в чашку Петри, перемешать им же.
Набрать в 3 шприца примерно по 3.5 мл. закрыть колпачками иглы.
Убрать шприцы в чистые зип-лок пакеты.
Инокуляцию проводить минимум через 12 часов.

Подготовка банок.

В нашем случае, будут использоваться 720 мл (800 г) банки, из-под огурцов, или помидоров. (Подойдут любые похожие банки, необязательно использовать именно такие).

Снимаем металлическую крышку и, используя любой предмет округлой формы, (например крышку от бутылки), очерчиваем на ее поверхности круг, диаметром 20-30 мм.

Затем, используя обычные ножницы, вырезаем в крышке отверстие.

После того, как мы вырезали отверстие, необходимо загнуть его края внутрь. Это можно сделать тупым, деревянным предметом, например скалкой, или ручкой от чего-либо, прилагая усилия в двух направлениях, (вниз и вбок).

Если все сделано правильно, должно получиться что-то вроде этого.

Изготовление ватно-марлевого тампона.

Теперь необходимо изготовить ватно-марлевый тампон.

Для этого отрезаем бинт или кусок марли (бинт должен быть довольно широким, 10-12 см), и складываем его в два слоя.

Кладем на бинт кусок ваты (ваты должно быть много, чтобы тампон получился достаточно плотным).

Поднимаем края бинта, и перевязываем их веревкой (если используется нитка, то ее необходимо сложить в несколько слоев).

После этого, обрезаем излишки бинта и веревки.

Готовый тампон, вставляем в проделанное нами отверстие,в крышке банки.

Тампон необходимо вставить таким образом, чтобы с обеих сторон крышкион выступал одинаково, (т.е. необходимо расположить крышку примерно по центру тампона).

осле того, как мы вставили тампон в отверстие, необходимо, одновременно, сильно прижать его ладонями сверху и снизу. Это делается для того, чтобы края тампона заходили дальше краев отверстия, что в свою очередь, предотвратит попадание бактерий через зазор между тампоном и крышкой.*

*Для того чтобы исключить попадание бактерий, тампон должен быть плотным, чем плотней он будет, тем меньше вероятность проникновения бактерий (но перебарщивать тоже не стоит, иначе воздух не сможет проходить сквозь тампон). Тампон делают, примерно в 1.5 раза большего размера, чем размер отверстия, в которое он будет вставляться.

Банка с тампоном выглядит так:

Подготовка субстрата.

Зерно необходимо предварительно отварить.

На каждую используемую нами банку, потребуется 150-170 мл (не грамм) зерна. Необходимое количество, легко определить, используя для этой цели мерный стаканчик.

Зерно, насыпаем в кастрюлю или ковшикв том объеме, который потребуется для приготовления необходимого нам количества банок.

Заливаем водой.

И ставим вариться на плиту.

Варить зерно до готовности*, нужно примерно 30-40 мин. (все зависит от количества).

*Зерно считается готовым тогда, когда на поверхности появляются отдельные, разваренные зерна, их должно быть немного, примерно 5-7% от общей массы.

Вода к этому времени, практически полностью выкипает.

После того, как зерно сварилось, его необходимо промыть холодной водой.

начала вода будет мутно-коричневой, а потом станет совершенно прозрачной. Это делается для того, чтобы зерно не слипалось.

Затем воду нужно полностью(!) слить, а зерно разложить по банкам.

Если все сделано правильно, зерно будет занимать, примерно 1/2 объема банки.

Теперь, банки с зерном, необходимо стерилизовать. Для стерилизации лучше использовать скороварку, но также подойдет и обычная кастрюля.*

*Перед стерилизацией, на дно кастрюли, необходимо положить кусок тряпки, или использовать какую-нибудь другую “подставку” (например, перевернутую тарелку), для того, чтобы банки не соприкасались с дном кастрюли, и не лопнули во время стерилизации. Воду в кастрюлю, следует наливать таким образом, чтобы она закрывала нижнюю часть банок, и чтобы она не выкипела за то время, пока банки будут стерилизоваться.

Оптимальное время стерилизации 1 час.

Банки лучше не вынимать из скороварки или кастрюли до тех пор, пока они полностью не остынут. Если банки вынуть сразу же после стерилизации, из-за разницы давления, они начнут затягивать в себя холодный воздух, а это может привести к тому, что вместе с воздухом, внутрь банки попадут микроорганизмы, которые в дальнейшем могут вызвать заражение субстрата.

После стерилизации, банки с субстратом должны остыть до комнатной температуры, (инокуляцию лучше проводить спустя сутки (гарантированный срок) после окончания стерилизации).

После стерилизации, зерно еще немного увеличилось в размере, и теперь занимает примерно 2/3 от объема банки.

Нигде в банке, не должно присутствовать ни какой свободной воды, а зерно должно выглядеть сухим и при постукивании кулаком по банке, легко рассыпаться на отдельные зерна.

Если все так - значит, все было сделано правильно.

Инокуляция субстрата.

Инокуляция готовым шприцом со споровой взвесью.

Если вы используете уже готовый шприц со споровой взвесью, то процесс инокуляции не должен вызвать особых проблем.

Благодаря тому, что субстрат и споровая взвесь остаются в герметично закрытых емкостях, для проведения инокуляции не требуется предварительная стерилизация помещения, в котором вы будете проводить работы. Так же можно обойтись без применения резиновых перчаток и марлевой повязки на лицо (хотя конечно, все эти меры предосторожности,существенно снижают риск заражения субстрата).

Берем банку и обильно смачиваем тампон спиртом, но так, чтобы спирт не начал капать на зерно.

После этого, берем приготовленный шприц со споровой взвесью, и прокаливаем иглу над пламенем горелки.

Иглу необходимо прокалить докрасна.

Затем опускаем иглу в банку со спиртом, (это делается для того, чтобы остудить иглу и не прожечь ей тампон).

И тут же, прокалываем смоченный спиртом тампон* и впрыскиваем некоторое количество споровой взвеси в банку с зерном. Для инокуляции одной банки, достаточно 2-3 мл споровой взвеси.

*Следите за тем, чтобы игла прошла тампон насквозь, и ее кончик показался внутри банки. Если этого не произойдет, то все споры окажутся в тампоне.

Если по каким-либо причинам тампон проколоть не удается, инокуляцию можно провести, аккуратно приоткрыв крышку банки (перед инокуляцией банку необходимо протереть спиртом).

Уход за банками.

После инокуляции, банки с зерном необходимо убрать в темное и теплое (25-30С) место. Поскольку присутствие света даже в небольших количествах тормозит развитие мицелия, если у вас нет возможности убрать банки в темное место их следует обернуть фольгой или каким-нибудь другим светонепроницаемым материалом.

Через 2-3 дня после инокуляции, (если инокуляция прошла успешно), кусочек агара начнет обрастать пухом мицелия, а в местах соприкосновения с зерном мицелий начнет перебираться на субстрат.

Мицелий растет довольно быстро и с каждым днем осваивает все большую поверхность субстрата, перебираясь по зернам и образовывая полностью заросшие участки.

Как только мицелий начал активно распространяться по субстрату, и появились полностью обросшие участки из нескольких зерен, субстрат можно “перетряхнуть”.

Во время перетряхивания, обросший мицелием участок субстрата разбивается на отдельные зерна, которые, попадая в новые места, образуют сразу несколько новых очагов развития мицелия - это существенно сокращает время освоения мицелием субстрата, и способствует более равномерному его зарастанию.

Но, поскольку большая часть зерна еще не обросла мицелием и риск ее заражения еще слишком велик, перетряхивать субстрат следует очень аккуратно. При перетряхивании, нужно следить за тем, чтобы зерно как можно меньше касалось крышки банки и самого тампона. В этих местах могут находиться посторонние микроорганизмы пробравшиеся “из вне” которые могут привести к заражению субстрата. Следует не “трясти” банку из стороны в сторону, а удерживая её в одной руке, другой рукой наносить удары по нижней части банки.

Таким образом, субстрат будет перемешиваться внизу банки, почти не попадая в ее верхнюю часть.

Сразу после перетряхивания субстрата, зёрна обросшие мицелием теряют свою “пушистость” и их практически невозможно отыскать в общей массе.

Но уже через 1-2 дня на некоторых зёрнах, становятся видны белые точки мицелия, которые быстро увеличиваются в размере и перебираясь на соседние зерна завоевывают новые территории.

Через несколько дней, мицелий разрастается по субстрату и снова образовывает полностью заросшие участки.

Когда это произошло, перетряхивание субстрата следует повторить.

С каждым новым перетряхиванием субстрата, очагов развития мицелия становиться все больше.

И зарастание происходит все быстрее.

Для полного обрастания субстрата мицелием, обычно требуется 3-5 недель, в зависимости от температуры окружающего воздуха.

Чем меньше остается неосвоенного мицелием субстрата, тем меньше риск его заражения при перетряхивании.

Но все равно, перетряхивать субстрат следует как можно аккуратней, т.к. если заражение все-таки произойдет, субстрат придется выбросить, а банку придется заново стерилизовать. И будет очень обидно, если это случиться уже в самом конце колонизации субстрата.

Если заражение субстрата все же произошло, субстрат из этой банки необходимо выбросить. Некоторые виды плесени содержат токсины и могут быть очень опасны для здоровья человека. Поэтому зараженный субстрат проще выкинуть и приготовить все заново.

Нормальный цвет мицелия - белый, допускаются лишь белый цвет с легким голубоватым или желтоватым оттенком. Нормальный запах мицелия - грибной, но запах мицелия практически не чувствуется, его можно почувствовать либо сразу после перетряхивания субстрата (уже на завершающей стадии, когда почти все зерно обросло мицелием), либо при перекладывании субстрата из банки в контейнер. Все другие цвета и запахи - признак заражения субстрата.

Полностью обросшее мицелием зерно выглядет так:

После того, как субстрат будет полностью(!) колонизирован мицелием, его можно пересыпать в контейнеры для стимуляции плодоношения.

Приготовление покровного грунта.

Покровный грунт готовится из смеси торфа и вермикулита в соотношении 2 / 1 соответственно.

Берем подходящую емкость и насыпаем в нее 2 части торфа.

Затем туда же насыпаем одну часть вермикулита.

Затем все это перемешиваем до получения однородной массы.

Теперь покровный грунт необходимо увлажнить. Для этого добавляем в нашу смесь воду. Обычно для достижения оптимальной влажности, воды требуется примерно столько же, сколько вермикулита (1 часть), может быть чуть больше.

Тщательно перемешиваем до получения однородной массы.

Влажность покровного грунта легко проверить, сжав его в кулаке. Если при этом между пальцами выступают капли воды - значит влажность оптимальная, если капли не выступают - воды следует немножко добавить, если вода вытекает ручьями - в смесь следует добавить вермикулита, либо торфа (вермикулит лучше впитывает влагу).

После того, как смесь приготовлена, покровный грунт необходимо стерилизовать. Для этого накладываем его в банку.

Закрываем банку крышкой (крышку можно закрывать плотно, поскольку покровный грунт довольно рыхлый, при избыточном давлении банка не взорвется).

Ставим ее в скороварку.

И стерилизуем в течение 30-60 минут. После стерилизации, покровная смесь должна остыть до комнатной температуры, (использовать покровный грунт, лучше спустя сутки после окончания стерилизации).

Покров.

Теперь, нам необходимо пересыпать обросший мицелием субстрат в пластиковый контейнер и "укрыть" его покровным грунтом.

Все операции необходимо проводить в стерильных условиях, работая в резиновых перчатках и марлевой повязке. Все рабочие поверхности перед началом работы необходимо протереть спиртом.

В нашем случае будет использоваться обыкновенный, пластиковый контейнер для пищевых продуктов емкостью 1.1 л.

Протираем контейнер спиртом (изнутри и снаружи).

Затем, предварительно протерев спиртом банку с субстратом, открываем крышку* и высыпаем зерно** обросшее мицелием в контейнер.

*Для того, чтобы крышка банки легко открылась, ее необходимо отвернуть заранее, а потом неплотно прикрыть и протереть спиртом.

**Для того, чтобы зерно легко высыпалось из банки, зерно необходимо предварительно "разбить" (т.е. проделать то же самое, что и при перетряхивании субстрата).

Затем, разламывая крупные куски мицелия, более-менее выравниваем поверхность.

После этого, предварительно протерев спиртом банку с покровным грунтом, "укрываем" субстрат, насыпая грунт слоем 2-3 см.

Не прижимая грунт (!) более-менее выравниваем поверхность.

Покровный грунт должен выглядеть “воздушным” и не образовывать крупных комков, если комки все же присутствуют их необходимо удалить, либо просто измельчить. Мицелия, не должно быть видно на поверхности покровного слоя. Если это вдруг произошло, присыпьте это место грунтом.

Теперь необходимо обернуть контейнер фольгой. Удобней всего, проделывать это в следующей последовательности: Расстилаем фольгу, ставим на нее контейнер и оборачиваем его сверху.

Затем отрезаем фольгу от рулона и загибаем ее с одной стороны.

После этого поднимаем все края и загибаем их к верху.

Теперь контейнер(ы) необходимо убрать в темное и теплое место сроком на 1 неделю. Поскольку фольга не пропускает свет, контейнеры достаточно поставить в помещение с температурой 25-30С. Через неделю, мицелий пробьется сквозь покровный грунт, и контейнер можно будет выставлять в парник, для начала плодоношения.

Подготовка парника.

В нашем случае, в качестве парника будет использоваться обычный террариум, который продается в любом зоомагазине. Почему террариум? Потому что его конструкция, не требует практически никаких доработок, и вместе с тем отвечает всем предъявленным ей требованиям.

Террариум очень удобно открывается, в него можно установить до 6 контейнеров (необходимо подобрать по размеру), у него прозрачный верх отлично пропускающий дневной свет, а также имеется несколько технологических отверстий, которые можно использовать по своему усмотрению (например для автоматизации системы вентиляции и(или) увлажнения).

Перед использованием, террариум необходимо тщательно вымыть.

Если вы не собираетесь использовать автоматическую систему вентиляции и увлажнения, то технологические отверстия лучше закрыть фольгой.

На дно террариума насыпается мелкий керамзит, (предварительно тщательно промытый), слоем 1-2 см.

После того как мы насыпали керамзит, его необходимо разровнять.

Затем в террариум необходимо налить воды так, чтобы слой керамзита оказался погруженным в воду примерно наполовину, (т.е. чтобы уровень воды доходил примерно до середины керамзитового слоя). Таким образом, достигается наиболее эффективная площадь поверхности, для максимального испарения воды.

В крышке террариума установлена съемная вентиляционная решетка, (чтобы животные находящиеся в террариуме могли свободно дышать) для создания парника, ее необходимо обернуть 2-3 слоями пищевой пленки по всей поверхности. Пищевая пленка надежно удерживается на решетке, на протяжении всего периода эксплуатации террариума, не позволяет влаге испаряться и прекрасно пропускает свет. Щели, которые остаются в местах крепления решетки к крышки террариума, закрывать не нужно, они создают дополнительную циркуляцию воздуха и обеспечивают необходимую вентиляцию парника.

Увлажняют парник, путем разбрызгивания воды из обыкновенного хозяйственного распылителя на крышку террариума. Такое увлажнение необходимо проводить 2 раза в день (утром и вечером). Дополнительно подливать воду в террариум нет необходимости. Избытки влаги, скатываясь с крышки террариума, собираются внизу и вновь испаряются благодаря увеличенной за счет керамзита поверхности.

Плодоношение.

Спустя неделю после покрытия (неделя - это оптимальный срок, подобранный опытным путем) достаем наш контейнер(ы) и снимаем фольгу. Проще не разматывать фольгу, а вырезать верх ножом или скальпелем (процедура напоминает открывание сметаны). ;)

К этому времени, мицелий должен местами показаться на поверхности покровного слоя. Если мицелия на поверхности слишком много, это значит, что, либо контейнер стоял дольше недели, либо толщина покровного слоя была меньше 2-3 см.

Еще раз хочу напомнить, что и толщина покровного слоя, и время отведенное на фазу активного роста мицелия в покровном слое, были подобраны мной опытным путем, в течение довольно длительного времени и являются, на мой взгляд, оптимальными.

Мицелий должен только-только начать пробиваться сквозь покровный слой.

Устанавливаем наши контейнеры в террариум.

И предварительно увлажнив, закрываем крышку.

Теперь, террариум необходимо установить в таком месте, где будет присутствовать дневной свет, но где на него не будут попадать прямые солнечные лучи. Наиболее подходящим, является место не вдалеке от окна.

Через несколько дней, мицелий пробивается практически по всей поверхности покровного соля.

Затем рост мицелия как бы замедляется, и на его поверхности начинают появляться круглые уплотнения - примордии.

Буквально на следующий день, в этих уплотнениях уже можно различить шляпку и ножку будущего гриба.

Террариум следует продолжать проветривать и увлажнять дважды в день (утром и вечером).

Если температура и влажность в парнике оптимальные, то грибы развиваются довольно быстро.

И уже за 2-4 дня вырастают до размера 5-10 см. (зависит от вида грибов).

Собирать грибы следует в тот момент, когда вуаль прикрывающая спороносный слой, у большинства грибов начинает рваться.

После этого момента, грибы визуально все еще продолжают расти, но роста грибной массы уже не происходит. Одновременно с разрывом вуали снижается и количество психоактивных веществ содержащихся в теле гриба.

Поэтому, если вы не планируете изготавливать споровый отпечаток, грибы необходимо собирать тут же, после разрыва вуали.

Выращивание мицелия в жидкой среде.

В любой аптеке покупаем любое лекарство для капельницы. Лекарство продается в 400 мл. и 200 мл. стеклянных бутылочках с резиновой пробкой.

Так выглядит эта бутылочка:

Должно получиться вот так:

Затем с помощью двух иголок и одного шприца (желательно большого объема), выкачиваем содержимое бутылочки. Пользоваться удобнее именно двумя иголками, и не высасывать жидкость из бутылочки, а наоборот, заполнять бутылочку воздухом. В результате избыточного давления, жидкость полностью удаляется из бутылочки в течении нескольких минут.

Естественно, чтобы жидкость вытекала, бутылку нужно перевернуть вверх ногами.

После того, как вся жидкость удалена из бутылки. Закачиваем в бутылку, примерно 100 мл. чистой воды и энергично трясем. Это делается для того, чтобы промыть бутылочку и окончательно избавиться от остатков лекарства. Проделать эту процедуру лучше 2-3 раза.

Теперь мы готовим питательный раствор. Раствор можно приготовить и из меда, но, на мой взгляд, удобнее использовать фруктозу. Во-первых, проще контролировать концентрацию раствора, отмеряя нужное кол-во вещества, во-вторых, раствор абсолютно не имеет цвета, (что облегчает обнаружение мицелия:)), к тому же, фруктоза продается везде и по своему составу, она совершенно одинаковая, а также, фруктоза может храниться довольно длительный промежуток времени, без видимых изменений.

Для приготовления раствора необходимо полностью растворить фруктозу в воде. Рекомендуемая концентрация 2 грамма фруктозы, на 100 мл. воды. Повышенные концентрации фруктозы в растворе, приводят к образованию более «жидкого» мицелия, то есть при приготовлении 4 % раствора фруктозы, мицелий, даже через длительный промежуток времени, будет легко засасываться в шприц через иглу. А при пониженных концентрациях, например, при приготовлении 1 % раствора фруктозы, мицелий, через некоторое время, будет образовывать довольно плотные сгустки, которые очень трудно втягиваются через иглу, но зато в таком виде, мицелий дольше хранится.

Раствора, следует приготовить около 300 мл. (если используется бутылка емкостью 400 мл.). Если используется бутылка меньшего объема, то раствора следует приготовить примерно на 2/3 от объема бутылки. Не следует заполнять бутылочку раствором «под завязку», так как при дальнейшей стерилизации, в результате нагревания, алюминиевый ободок который удерживает пробку, может не выдержать. Далее, закачиваем раствор в бутылочку. Для этого также, лучше использовать две иглы и один шприц. Вторая игла, позволит воздуху выходить из бутылки, не образовывая избыточного давления. После того, как мы залили раствор в бутылку, ее следует простерилизовать.

Стерилизовать бутылочку, можно как в кастрюле, так и в скороварке. Единственное условие, стерилизацию следует проводить, не более 30 мнут, иначе может произойти карамелизация фруктозы, и на ней ничего не вырастет.

После стерилизации, даем бутылочке остыть, до комнатной температуры. И только после полного остывания, производим инокуляцию споровой взвесью. Затем помещаем бутылочку в теплое (~ 25C), темное место и ждем результатов. По прошествии 24-48 часов, обычно начинается бурное разрастание мицелия. Но в некоторых случаях, первые признаки разрастания мицелия проявляются лишь на 5-7 день. В любом случае, неделя - контрольный срок, если за это время ничего не произошло, и раствор по-прежнему, абсолютно прозрачный, стоит все переделать заново.

Хранить мицелий, выращенный таким способом, следует в холодильнике. Для длительного хранения этот метод не подходит. Максимальный, гарантированный срок хранения: 2 месяца.

Основы работы с агаром

Что такое агар и где его достать

Процедура приготовления

Инокуляция

Инкубация

Хранение культур

Выделение чистой культуры

Удаление очага заражения

Пересадка мицелия

Агар (устаревшее название агар-агар) - продукт, получаемый из красных и бурых водорослей (таких как Eucheuma spinosum Ag., E. gelatinae Ag., Gelidium cartilagineum (Grev. и др. ) и образующий в водных растворах плотный студень. Представляет собой белый, похожий на муку порошок.

Состоит в основном из полисахаридов. Применяется в составе питательных сред для культивирования бактерий, грибов, водорослей, а также в кондитерской промышленности, при производстве желейного мармелада, желе, пудингов, мясных и рыбных студней, и т.д.

Биологический (лабораторный) агар отличается от пищевого более высоким качеством, стоимость пищевого агара при этом намного ниже. При использовании в домашних условиях, качество агара является не столь значимым, поэтому есть смысл, брать именно агар используемый в кондитерской промышленности.

Пищевой агар разделяется по плотности, например: Агар М 500, Агар G 700, Агар -900, и т.д. Чем больше число в названии, тем большей вязкостью / плотностью будет обладать полученный гель / студень. Пропорционально увеличению плотности, уменьшается расход агара, но при этом увеличивается его цена.

Если плотность агара неизвестна, его расход можно подобрать экспериментальным путем, получив среду напоминающую по консистенции мармелад. Если среда будет слишком мягкая, Вам будет неудобно переносить отрезанные кусочки.

Найти где продается агар, можно на сайте журнала товары и цены , набрав слово "агар" в строке поиска.

Для выращивания мицелия высших базидиомицетов используются различные питательные среды на агаровой основе. В зависимости от выращиваемого вида, а так же от поставленных целей, питательные среды могут различаться по составу, уровню Ph, вязкости и т.д.

Не будем подробно останавливаться на приготовлении сложных агаровых сред, кому интересен этот вопрос, без труда сможет отыскать необходимую информацию в соответствующей литературе. Рассмотрим приготовление двух самых простых, и в тоже время, подходящих для выращивания огромного количества видов грибов, питательных средах - среды на зерновом, и среды на картофельном отваре.

2 часть

Питательная среда из зернового отвара

Состав: Зерновой отвар* -100 мл**; агар - 1,5 г.***

* Можно использовать отвар, который остается у Вас после приготовления зерна (если Вы используете зерно в качестве субстрата), но только если зерно варилось без добавления Н2О2. В противном случае, агар попросту не застынет.

**Расход среды на одну 100 мм чашку Петри ~ 30-50 мл.

*** При использовании девятисотого агара.

Процедура приготовления

Берем около 100 мл зерна (пшеница, рожь, ячмень, овес и т.д.),

высыпаем в емкость,

ставим на газ,

доводим до кипения,

За это время часть воды выкипит, а оставшаяся часть окрасится в приятный, темно-коричневый цвет.

Получившийся отвар необходимо профильтровать. В качестве фильтра можно использовать сложенную в несколько слоев марлю, или хлопчатобумажную ткань. Их укладывают в сито или воронку и аккуратно выливают отвар.

Зерно и мелкие частицы, оставшиеся на фильтре выбрасывают.

Если количество отвара получилось меньше, чем Вы рассчитывали, доведите его до нужного объема долив необходимое количество воды (используется обычная вода из-под крана).

Получившийся отвар переливаем в небольшую емкость,

Ставим на газ, доводим до кипения и уменьшаем огонь.

Размешивая, снова доводим отвар до кипения.

Продолжая постоянно помешивать, добиваемся ПОЛНОГО растворения агара. Как только это произойдет - среда готова.

После приготовления, тут же разливаем готовую среду по чашкам Петри. (Чашки Петри сделаны из закаленного стекла, поэтому они не лопнут.)

Наливать среду, следует слоем 3-5 мм.

После этого накрываем чашки Петри,

И установив их одна на другую в какую-нибудь тарелку или блюдце, (так будет удобнее переносить их с места на место),

Ставим в скороварку (или кастрюлю),

И стерилизуем в течение 1 часа.

Питательная среда из картофельного отвара

Состав: Картофельный отвар -100 мл; агар - 1,5 г.

Процедура приготовления

Берем 150 г картофеля,

Тщательно отмываем его от земли,

Не очищая, нарезаем кубиками ~1х1 см,

Высыпаем в емкость,

Заливаем 500 мл воды (используется обычная вода из-под крана),

Ставим на газ,

Доводим до кипения,

Делаем маленький огонек, и варим в течение 30 минут.

За это время часть воды выкипит, а оставшаяся часть окрасится в светло-желтый цвет.

Полученный отвар, так же необходимо профильтровать.

С готовым отваром, поступаем точно так же, как и в предыдущем случае.

Изготовление инокуляционной петли

Берем самую длинную, какую сможем найти иглу (замечательно подходит "набор игл для шитья кукол"),

Нагреваем докрасна,

И не очень сильно , расплющиваем молотком 1-2 см ее острия.

Должно получиться что-то подобное.

Зажав самый кончик иглы (5-7 мм) в тисках, загибаем его под прямым углом (буквой "Г"),

И слегка приплющиваем по бокам.*

*Это делается это для того, чтобы обеспечить лучший контакт инокуляционной петли при соприкосновении с поверхностью.

Теперь делаем ручку - оборачиваем противоположенный конец иглы изолентой.

В результате получается вот такая, (очень удобная для работы со спорами) инокуляционная петля.

Инокуляция

Аккуратно, стараясь не сдвигать крышки , вынимаем чашки Петри из остывшей скороварки, и откачиваем шприцем воду скопившеюся в блюдце.

Конденсат образовавшийся внутри, на крышках чашек Петри, опасности не представляет.

Работы по проведению инокуляции, должны проводиться в стерильных условиях! Для этого, все необходимые инструменты (инокуляционную петлю, скальпель, вату, спирт, горелку и т.д.), а так же приготовленные чашки Петри, переносят в помещение, которое затем, в течение некоторого времени* обрабатывают бактерицидной лампой.

*(30-60 мин., зависит от площади помещения и мощности лампы.)

Зайдя в помещение, расставляем инструменты так, чтобы нам было удобно работать. Протираем спиртом все поверхности.

Инокуляционную петлю погружаем в спирт,

и прокаливаем ее докрасна над пламенем горелки.

Затем снова погружаем в спирт,

подносим к горелке, и тут же (пока горит спирт) несем петлю к чашке Петри.

Слегка приоткрыв крышку (не смещая ее в сторону), погружаем инокуляционную петлю в агар*.

*Это делается для того, чтобы инокуляционная петля стала липкой от оставшегося на ней расплавленного агара. (Так же, при этом происходит охлаждение инокуляционной петли до безопасной для спор температуры.)

Сразу же после этого, слегка приоткрыв пакетик с отпечатком, не касаясь его краев, соскребаем инокуляционной петлей часть спор*.

*Если отпечаток хорошего качества, достаточно едва коснуться петлей, чтобы к ней прилипли тысячи спор. Если отпечаток совсем бледный, можно основательно поскрести острым концом инокуляционной петли по бумаге, чтобы вместе с частичками бумаги наверняка захватить часть спор.

После этого, сразу же переносим инокуляционную петлю обратно к чашке Петри, и так же, слегка приоткрыв крышку (не смещая ее в сторону), касаемся поверхности агара в нескольких местах.

Если спор было достаточно много, они будут заметны на поверхности агара. Если спор было мало, на агаре останутся только следы от контакта с инокуляционной петлей. В любом случае, споры попали на питательную среду, в благоприятные условия, и через несколько дней должны прорасти.

Обязательно подписывайте свои чашки Петри (название вида, дату инокуляции и т.д., все, что считаете нужным), иначе потом Вы запутаетесь, что, где растет.

Теперь, чашки Петри необходимо обернуть пищевой пленкой. Это делается для того, чтобы предотвратить проникновение в них посторонних микроорганизмов.

Накладываем пленку поверх чашки Петри,

поднимаем чашку Петри, опуская при этом пленку

и обрезаем ее с небольшим запасом.

Теперь стягиваем края пленки вниз по всему периметру чашки Петри,

и закручиваем их (как фантик).

Закрученные края плотно прижимаем рукой

и в таком виде, убираем чашки Петри в темное, теплое (23-27С) место, на весь период инкубации.

Инкубация

Через 3-10 дней (в зависимости от количества и качества спор) споры прорастают - в местах инокуляции появляется белый пух мицелия.*

* Мицелий любого другого цвета, или консистенции, (например пленка, или слизь) является явным признаком заражения и должен быть немедленно удален.

Через несколько дней, очагов мицелия становится больше, и он продолжает разрастаться.

Очаги мицелия могут появляться не только в местах, контакта с инокуляционной петлей, но и по всей поверхности агара. Это происходит потому, что пока Вы совершали манипуляции внутри чашки Петри, некоторые споры упали с инокуляционной петли сами по себе, и теперь они проросли. Так же, споры могли переместиться в результате движения жидкости (упавшие капли конденсата).

Если во время инкубационного периода, заражения среды посторонними микроорганизмами не происходит, через 3-4 недели, мицелий полностью осваивает поверхность агара.

Хранение культур

После того, как мицелий полностью освоит поверхность агара, чашки Петри убирают на хранение в холодильник. При температуре +3-5С процессы жизнедеятельности мицелия замедляются, и он может сохраняться в таких условиях несколько лет. В течение этого времени мицелий постепенно поедает питательную среду, поэтому, чем толще был ее слой, тем дольше мицелий сможет питаться.

По мере надобности, чашки Петри с мицелием достают из холодильника и отрезают кусочки агара для проведения инокуляции*, или для пересадки культуры на свежую питательную среду.**

*Для проведения инокуляции отрезают небольшой (~ 1х1 см) кусочек агара с мицелием и помещают его в емкость с субстратом. Через несколько дней мицелий перебирается на субстрат и постепенно осваивает его целиком. Фото работ по проведению инокуляции кусочками агара, можно посмотреть в иллюстрированном руководстве по выращиванию грибов .

Поскольку для проведения одной инокуляции, достаточно малюсенького кусочка агара, одной 100 мм чашки Петри, хватает на проведение 20-30 инокуляций.

**Такой метод хранения, называется "метод вегетативных пассажей ", он позволяет сохранять полученную культуру практически в неизмененном виде. Чем реже происходит пересев, тем меньше клеточных делений претерпевает культура и тем ближе она по своим свойствам к исходному изолянту. Пересадку мицелия на новую среду, в этом случае, рекомендуется проводить не чаще одного раза в год.

Для длительного хранения культур, удобно использовать пробирки со скошенным агаром. Готовую среду разливают по пробиркам, закрывают их ватно-марлевой пробкой, и после стерилизации, пока агар не застыл, устанавливают в наклонном положении - скашивают агар. После того как агар застынет, пробирки инокулируют мицелием, дожидаются полного обрастания поверхности агара, и убирают на хранение в холодильник.

Длительность хранения при этом, достигается за счет уменьшении площади роста мицелия и увеличении толщины питательного слоя (по сравнению с чашкой Петри).

Выделение чистой культуры*

* Чистая культура - это клетки микроорганизмов одного вида. (В нашем случае, это мицелий культивируемого гриба).

Если во время роста мицелия, произошло заражение среды посторонними микроорганизмами, необходимо как можно быстрее отделить чистый мицелий, от конкурирующей микрофлоры. Это можно сделать двумя способами.

1. Удаление очага заражения

В случае "точечного заражения", (когда очаг заражения небольшой и локализован в одном месте), его проще вырезать и выбросить, оставив не тронутой основную часть мицелия.

Работы по выделению чистой культуры, должны проводиться в стерильных условиях!

Берем чашку Петри, в которой произошло заражение,

входим с ней в стерильное помещение, протираем все поверхности спиртом, погружаем скальпель в спирт, прокаливаем его над пламенем горелки, снова погружаем в спирт, подносим к горелке, и тут же (пока горит спирт), несем его к чашке Петри.*

Слегка приоткрыв крышку (не смещая ее в сторону), вырезаем скальпелем кусок агара, с растущей на нем плесенью,

подцепляем его кончиком скальпеля и удаляем.

Чашку Петри с удаленным очагом заражения оборачиваем пищевой пленкой и убираем в темное, теплое место, на весь период инкубации.*

*Смотри фото аналогичных действий при проведении инокуляции.

Если заражения посторонними микроорганизмами не произойдет, через некоторое время (зависит от того, на какой стадии роста мицелия произошло удаление очага заражения), мицелий полностью освоит поверхность агара.

2. Пересадка мицелия

В случае, когда посторонняя микрофлора занимает значительную часть, и вырезать ее не представляется возможным, из зараженной чашки Петри извлекают кусочек агара с чистым мицелием, и пересаживают его на новую среду в другую чашку Петри.

Берем чашку Петри, в которой произошло заражение, входим с ней в стерильное помещение, протираем все поверхности спиртом, погружаем скальпель в спирт, прокаливаем его над пламенем горелки, снова погружаем в спирт, подносим к горелке и тут же (пока горит спирт) несем его к чашке Петри.*

*Смотри фото аналогичных действий при работе с инокуляционной петлей.

Слегка приоткрыв крышку (не смещая ее в сторону), вырезаем скальпелем кусочек агара с чистым мицелием,

подцепляем его кончиком скальпеля

и переносим на новую среду, в другую чашку Петри.

Чашку Петри накрываем, подписываем, оборачиваем пищевой пленкой и убираем в темное, теплое место на весь период инкубации.*

*Смотри фото аналогичных действий при проведения инокуляции.

Через несколько дней, пересаженный кусочек опушится мицелием, а еще через несколько дней мицелий переберется на новую среду. Если заражения посторонними микроорганизмами не произойдет, через 3-4 недели, мицелий полностью освоит поверхность агара.

Mokki7.12.2007, 21:09
Добрый вечер, Владимир

Цитата(Vladimir @ 15.9.2004, 18:43)
Вам требуется разъяснение деталей получения мицелия из спор? С уважением, Владимир.

С уважением, Дмитрий.

Vladimir10.12.2007, 15:46
Цитата(Mokki @ 7.12.2007, 21:09)
Хотелось бы услышать, для сравнения со своим «босяцким» методом.

Здравствуйте, Дмитрий!
Полно, Вам принижать свои познания и возможности, ведь уже с самого начала был понятен уровень Вашей компетенции.
А, используемый Вами метод, вполне приемлем для скрещивания и селекции.
Если бы мне пришлось ответить Сергею "Труженику", то вряд ли я стал углубляться в объяснения более того, что мы с Вами уже обсудили в теме "Селекция грибов".
С уважением, Владимир.

Mokki10.12.2007, 19:16
Цитата(Vladimir @ 10.12.2007, 14:46)
Полно, Вам.

Mokki30.12.2007, 16:30
Интересно, а какова будет всхожесть спор, если они полежат года два, три и если им перед инокуляцией, дать полежать в воде пару суток, для набухания?
Где-то в сети читал, что реанимировали какой-то штамм гриба, из отпечатка 10ти летней давности!

Vladimir31.12.2007, 9:43
На мой взгляд, споры для того и существуют, чтобы дать организму время для поиска удачного места колонизации питательной среды.

Единственной сложностью такой методики является сохранность спор от запыления - чрезмерного инфицирования. В этом случае шанс выделить из общей массы, искомую спору становится маловероятным.

При этом следует помнить, что срок хранения спор, хоть и в меньшей степени, чем вегетативных клеток, но находится в корреляции с условиями хранения. Успешное прорастание спор зависит от запаса в них некой жизненной энергии, а хранение, хоть и незначительно, но приводит к её потере - вспомните, про вирусы и прочую мелкую флору, они ведь тоже хочут есть.

Длительное воздействие отрицательных температур также сокращает время хранения, потому что постепенно ведет к денатурации составных элементов споры.

Mokki31.12.2007, 14:04
Через тысячи лет они, конечно, теряют способность к жизни, но столетие должны выдержать.
Попробуйте посадить споры с выдержкой в сто лет, если не получится, то уменьшите временную экспозицию в два раза. Если во втором случае прорастут, то снова увеличьте время наполовину. Таким образом, по принципу "Недолет - перелет", через пару сотен лет Вы сможете определить точное время хранения спор.

Цитата(Vladimir @ 31.12.2007, 8:43)
Вспомните, про вирусы и прочую мелкую флору, они ведь тоже хочут есть.

Цитата(Vladimir @ 31.12.2007, 8:43)
Так что, учитывая эти условия можно через некоторое время ответить на поставленный Вами вопрос, только, пожалуйста, не забудьте сообщить нам о результате исследований

Vladimir31.12.2007, 18:30
Если, это точно, и если споры будут прорастать через пару лет, это очень хорошо, это очень удобно! Взял лок пакетик, положил туда стерильный отпечаток, не пыль не попадёт, не влага и всё это дело, в какую ни будь книжку и на полку, и не надо мучится с мицелием.

Я даже представить не мог, что с мицелием можно ещё и мучиться. Лично у меня ломка начинается, если рядом нет растущего мицелия, хотя бы в одной малюсенькой емкости. Дома ботанический сад, какой то - у дочери в комнате зеленые джунгли, а у меня страшно сказать, что. Поэтому нет проблем с хранением культуры – она хранится сама собой, в процессе постоянного развития.

Цитата(Mokki @ 31.12.2007, 14:04)
Вот именно их, я и помню. Про всех «спороносов» нам говорили, что и сто лет могут лежать и более, и быть живыми, а в сети на всех сайтах читаю, что полгода хранения грибных спор и всё, прорастания не будет, а потом советуют вместо спор хранить, субстратный мицелий в холодильнике.

Мицелий хранят, для сохранения сортовых качеств культуры.
А по поводу спор теоретически можно предположить, что не все виды спор предназначены для длительного хранения. Возможно, что двуядерные споры предназначены для быстрой колонизации почвенной площадки.
Представьте, что Вы шампиньон, нечаянно выросший на плодородной лужайке из только что образованной, и поэтому маленькой колонии мицелия. В этом случае у Вас появляется выбор - колонизировать вкусную полянку мицелием с радиальной линейной скоростью роста 9 мм в сутки или быстренько засеять всю полянку двуядерными спорами, которые прорастая, сразу опутают все пространство и не дадут шанса конкурентам.

Mokki1.1.2008, 14:48
Я даже представить не мог, что с мицелием можно ещё и мучиться.

Не совсем верно Вы меня поняли. Проще же сохранять культуру всю свою жизнь в «конверте», чем иметь всю свою жизнь в комнате и холодильнике, окружение различных баночек и скляночек, это и не красиво и более трудоёмко, а другого помещения у меня нет. Сорт для меня не важен, важна культура, а нужный штамм для себя, подберу из мультиспоры.

Цитата(Vladimir @ 31.12.2007, 17:30)
Таким образом, можно предположить, что одноядерные споры предназначены для долгих странствий в атмосфере в поисках лучшей жизни, а двуядерные споры не имеют такой приспособленности к консервации "(условно)жизненной энергии", но зато имеют значительный энергетический запас для активного стартового роста в питательной среде.
Конечно, всё это лишь гипотеза, которую лучше бы проверить экспериментально.

Вот кое-что нашёл:

«Размножение Г. У Г. различают вегетативное и репродуктивное (как бесполое, так и половое) размножение. Стадия полового размножения Г. называется совершенной, или высшей, а бесполого репродуктивного размножения - несовершенной. Вегетативное размножение осуществляется обрывками или частицами мицелия, шнуров и ризоморф, а также склероциями. Эти частицы расселяются различными путями и, попав в благоприятную среду, могут дать начало развитию новой грибницы. Более специализированный способ этого типа размножения - разъединение грибницы на отдельные клетки (споры) - оидии, геммы и хламидоспоры. Оидии - округлые или удлинённые клетки, покрытые тонкой оболочкой, неспособные долго сохраняться (встречаются большей частью у голосумчатых и многих др. Г.); геммы имеют более толстую, как правило, окрашенную оболочку и способны к длительному сохранению (встречаются у сумчатых, низших, несовершенных Г., а также у некоторых головнёвых, в частности у возбудителей головни овса); хламидоспоры возникают путём обособления и уплотнения отдельных участков гифы, которые при этом покрываются толстой тёмноокрашенной оболочкой (они характерны для многих головнёвых, встречаются у сумчатых и фузариевых Г.). Разновидностью вегетативного размножения является почкование) свойственное дрожжам».

Vladimir2.1.2008, 12:07
Здравствуйте, Дмитрий!
Да, этот отрывок текста бесспорно интересен и особенно тем, что автор попытался осветить вопрос с нескольких точек зрения сразу.
Но недостатком этого текста, по моему мнению, является невнятное формирование мысли в целом и нечеткое разграничение этой мысли по заложенным в текст вопросам.

Из первых двух предложений совершенно непонятно – определился ли сам автор с тем, что он вкладывает в понятие «репродуктивное размножение».
Из первого предложения четко видно, что автор связывает это понятие с половым процессом, а понятие «вегетативное размножение» связывает с бесполым процессом.
Остаётся непонятно, почему автор далее пишет о репродуктивной стадии, как о неполовом процессе?

При этом, почему то, не обозначен тот факт, что в реальности половой процесс идет параллельно с вегетативным развитием мицелия и выделить его в отдельную фазу жизненного цикла мицелия не представляется возможным.
В этом смысле, даже вегетативную стадию развития мицелия, нельзя считать бесполой, хотя сам половой процесс в этой стадии действительно можно условно обозначить, как несовершённый (незаконченный). Окончание полового процесса можно условно обозначить в генеративной фазе развития мицелия – при появлении плодового тела гриба и образовании спор.
Поэтому корректно было бы считать, что репродуктивных стадий в общем цикле развития мицелия высших грибов две:
1. При образовании спор;
2. При образовании двуядерного мицелия от слияния мицелия одноядерного разной полярности.

И хоть в тексте нет слова о базидиальных грибах, но в целом Вы действительно, нашли убедительное подтверждение гипотезы о том, что и споры грибов могут иметь различную функциональную специализацию, а поэтому и различные сроки сохранности.

С уважением, Владимир.

Mokki3.1.2008, 19:06
Здравствуйте, Владимир!

Цитата(Mokki @ 1.1.2008, 13:48)
Из вышесказанного я сделать вывод (может он ошибочный), что мы разговариваем сейчас про, оидии, которые долго не хранятся. И всё же, в тексте нет слова о базидиальных грибах.

«Оидии (новолат., единственное число oidium, уменьшительное от греч. ōуn - яйцо), мелкие клетки, на которые распадаются гифы (нити) грибницы некоторых несовершенных и базидиальных грибов; служат спорами вегетативного размножения. У гетероталличных (см. Гетероталлизм)базидиальных грибов О. выполняют роль спермациев при диплоидизации мицелия».

С уважением, Дмитрий.

Vladimir4.1.2008, 10:49
Цитата(Mokki @ 3.1.2008, 19:06)
Нет, ошибочный вывод, на «базидиях» образуются не оидии:
Тогда базидиоспоры, это получается геммы, что ли?

Здравствуйте, Дмитрий!
А стоит, ли мучиться столь условным вопросом? Геммы это, или трамтарарамы - что это меняет? На мой взгляд, главное понятно - грибы имеют разнообразные адаптационные механизмы размножения (и не только размножения). В обсуждаемом случае, эти механизмы представлены спорами различного функционального назначения.
Если имеется желание глубокого изучения этого вопроса, то в этом случае придется оставить в жизни все остальное и начать заниматься только этим.
Но и в этом случае, не хватит жизни, чтоб понять всё.
Допустим, что Вам удастся идентифицировать споры по их форме и толщине оболочки, допустим, что при этом удастся провести аналогии с другими грибами, но все равно, это будет только "маленькая вершинка огромного айсберга познания сущности вопроса".

Конечно, наука и служит таким познаниям, но жизнь коротка и поэтому давайте, же найдем вектор выхода нашей энергии, иначе мы начнем изучать всё и не добьемся при этом, ни чего конкретного.
Вектор, это направление к цели, достижение которой достойно приложенным к этому усилиям.

Можно, конечно радоваться и делать выводы от промежуточных результатов, но в этом случае появляется риск "скатиться" к примитивизму в выводах.

Имеется очень яркий пример такого примитивизма в методологии грибного производства. Достаточно вспомнить распространенные утверждения о том, что триходерма в природе, оказывается, представлена всего четырьмя штаммами, и вообще, получается, что любое инфицирование субстратов и компостов связано только с триходермой.
Можно ли успешно развивать производство грибов, вооружившись такими убеждениями?
На мой взгляд, это вопрос риторический.

С уважением, Владимир.

Mokki4.1.2008, 13:43
Здравствуйте, Владимир!

Цитата(Vladimir @ 4.1.2008, 9:49)
Однако я увлекся - так что Вы там о спорах говорили?

Продолжаю:

«Самое интересное для определения возраста Земли и даже времени появления грибов – так называемые «фоссильные споры». И вот почему они способны очень долго сохраняться. Там есть хитин, он сохраняется, и есть еще удивительный биополимер – спорополленин. Кстати сказать, этот спорополленин есть и у пыльцы растений. Химически спорополленин представляет собой молекулу каротина, из которой в результате окислительной полимеризации получается длинный полимер – этот вот спорополленин.
Почему сейчас этими двумя биополимерами очень интересуются? Они обладают удивительной способностью длительное время сохраняться. На них не действуют ферменты, которые содержаться в почве. Кроме того, они довольно хорошо переносят колебания температур. Самое интересное, что на них не действуют кислоты и щелочи, нужен озонолизис, чтобы растворить спорополленин. Короче говоря, его можно растворить только в «царской водке». А хитин не растворяется ни в воде, ни в органических растворителях. Нужны специальные растворители, очень сложные, чтобы растворить эту молекулу. И если поверхность какого-нибудь прибора, предположим, покрыть спорополленином, то это будет вечное покрытие. Вот из-за этих двух биополимеров споры грибов очень длительное время сохраняются в почве.
И когда начались эти работы, обнаружили резаморфы и эти споровые отпечатки обнаружили на растениях – это более 200 миллионов лет назад».

С уважением, Дмитрий.

Vladimir5.1.2008, 12:51
Добрый вечер, Дмитрий!

Тема биополимеров грибов, в будущем, ещё заявит о себе.
Хитины, уже сегодня используют в Японии для производства заменителя кожи человека.
Благодаря этому в Японии созданы методики спасения людей, получивших 90% ожоги.
Так же, из хитинов производят адсорбенты нового поколения, многократно превосходящие по свойствам активированный уголь.
Перечислять все области применения препаратов из хитина нет смысла, потому что в настоящее время, в качестве сырья, используются отходы в виде панциря ракообразных животных после океанического промысла. Отходы не имеют производственной составляющей себестоимости, и поэтому их использование всегда предпочтительнее (с точки зрения экономики производства) любого промышленного продукта. В результате промышленное получение хитина из грибов на современном этапе пока не актуально.

Но справедливости ради нужно сказать, что отдельные представители бизнеса России уже начали активно интересоваться хитинами грибов. В частности, на Российском конкурсе инновационных проектов в Саранске, ко мне подходил представитель венчурного капитала и задал несколько вопросов по данной тематике.

Касательно спорополленина - пару лет назад я даже статью написал, но не рискнул ее обнародовать, потому что название и смысл получились чрезмерно вольными, а образ сумасшедшего не показался для меня привлекательным.

Цитата(Mokki @ 4.1.2008, 13:43)
... споровые отпечатки обнаружили на растениях – это более 200 миллионов лет назад».

Значит в людях еще скрыт огромный потенциал долгожительства

С уважением, Владимир.

Mokki5.1.2008, 13:04
Цитата(Vladimir @ 5.1.2008, 11:51)
Статья имела следующее название: «Грибы были предками людей». Каково?

А статья эта, ещё жива?

Vladimir5.1.2008, 21:31
Цитата(Mokki @ 5.1.2008, 13:04)
А статья эта, ещё жива?

В теме генетических модификаций я упоминал о студентах, которые влезли в программу моего компьютера. Windows пришлось менять. Много чего там погибло. Из этого всего, статейку меньше всего жаль.
Но что интересней всего, что буквально за пару недель до этого случая "полетела" материнская плата на домашнем буке и я его обменял в магазине на деньги, а в этом буке была дублированная информация.
Вот такая необъяснимая шутка природы.

SERGO8.7.2008, 14:02
Цитата
Недавно узнал что оказывается можно размножать не только агаровым отпечатком, но ещё и грибной споровой взвесью.
А как можно её получить, или где подробней есть тому описание подскажите пожалуйста...

Хоть и прошло уже кучу лет, но позволю себе ответить. Технологически это очень легко. Нужно иметь рюмку, шприц, споровый отпечаток, кипяченую воду, или жидкость которую используют для уколов. Вода в рюмке, соскребаем споры в жидкость, мешаем, втягиваем в шприц. Жидкость оставляем на 12 часов, для регидрации спор, все можно работать. Ну главное условие при проведении процедуры, это максимальная стерильность, вот и все. Но для работы с вешенкой лучше использовать клонирование. Покупаете в магазине гриб, в стерильных условиях вырезаете со средины ножки кусочек, мокаете в перекись, и пока все шыпит перекидываете на стерильное зерно. Я когда-то таким способом клонировал лесную грифолу.

Сбор урожая

Итак, из вашего чудо туба вылезло долгожданное полкило, что дальше?

Если вы растите из мультиспора, очевидно, что грибы будут разного размера и степени зрелости. Во многих руководствах написано, что всю волну надо убирать за раз, т. к. нераскрывшиеся грибы после якобы шока перестанут развиваться и т. п. На самом деле это не совсем так. Ну вот представьте себя на месте грибов: раскинули вы свою сеть, начали переть в рост, а тут набежали слоны/коровы/жуки и пожрал/потоптали некоторых из вас. Глупо из-за этого переставать расти по всей своей сети. Задача выжить, как и у всего живого. Поэтому собирать волну можно не за раз.

Момент, на котором гриб готов к сбору, для каждого различен. Если нужны принты, то естественно нужно ждать раскрытия шляп. Если принты не нужны собирать можно нераскрывшиеся. Кто был в голлашке, заметили, что свежие кубы там продают в состоянии с нераскрывшейся шляпой. Я обычно собираю тогда, когда вуаль еще не разорвалась, во-первых это снижает количество полученных грибов (да, да бывает и такое), во-вторых потенция таких грибов чуть больше, чем у грибов с открывшейся шляпой.

Ждем до того момента когда самые ранние грибы первой волны достигнут желаемого размера. Обычно это 5-8 грибов большого размера. Аккуратно собираем их, стараясь не тревожить остальных. Если что-то тащится с ними, убираем это тоже.

Потом закрываем туб как было и ждем еще несколько часов (от 3 до 18) собирая походу то что достигает нужного состояния. Естественно те грибы, которым суждено было абортнуться, не ждем до упора. Тех кто ростом не вышел (из отдельных микроколоний) тоже не ждем. Через максимум 18 часов блок нужно подчистить.

Во время начального пиннинга образуются примордии для обеспечения первых двух волн, поэтому полностью почистить блок, равносильно, для рачительного грибовода, удару себе серпом по яйкам.

Удалять нужно грибы, которые имеют ярковыраженную ножку и шляпку, и которые по цвету темнее (начали проявлять признаки деградации). Если вы видите грибочек, но он имеет еще близкую к яйцеобразной форму, его не трогайте, из него весьма вероятно выйдет большой красивый гриб второй волны. Поможет наметать глаз на то что стоит убирать, а что нет только практика и фото, которые пока не сделаны.

Эксперементальный блок с абортами

А что если не чистить блок вообще? Не ну правда, уборка урожая тратит время и силы, а завтра еще вставать рано может ну его, а?

Сказано-сделано. Прет вторая волна, неубранные аборты деградируют, темнея, синея и

теряя свежесть. Многие из них опушаются у ножек. Многие поглощаются мицелием,

Глава: Сбор урожая

пушащимся снизу ног грибов второй волны. Снимаю вторую волну. Маленькие аборты первой волны к этому времени выглядят совсем не бодро. Их маленькие тела скукожываются и начинают сгибаться под собственным весом. Несмотря не не бодрый вид, никакой контаминации не наблюдается и принимается решение регидрировать блок перед третьей волной в том же виде как он есть, не почищая. Блок окончательно переходит в категорию экспериментальных.

После 6 часов регидрации блок вынимается из туба, и отправляется в выжиматель на подставку. Все что из него торчит выглядит стремно, размокшие отмирающие аборты местами похожи на куски серой слизи прилипшие к субстрату. 3-4 дня блок тупит, и ничего не происходит, на 5й день он начинает слегка пушиться мицелием. Пух нарастает на абортах тоже, хотя и не съедает их полностью, местами начинают лезть новые пины их пока не много, но по их виду можно понять, что они выйдут крупными.

Всего блок прожил 5 волн, и был выкинут, но не потому что контаминировал, а потому что сильно уменьшился в размерах и пересох.

Мораль этой истории такова, что если вы растите не на чистом зерне сильно блок можно не подчищать. Единственный момент, что после второй волны блок переезжает в пространство без стенок, в пакет, а потому, влага имеет возможность испаряться со всей поверхности блока. Те аэрация присутствует одинаково со всех его сторон. Если оставить блок в контейнере после 2й волны, можно получить загнивание абортов по краям и внизу контейнера.

Моя теория такова. Т. к. грибы стремятся выжить, они будут использовать для этого любой ресурс. И я считаю, что для них вполне реально и приемлемо захавать собственные отмирающие части, с целью пополнения собственного запаса. Думаю именно этим они занимаются, пока блок тупит после регидрации.

Снятие, сушка и хранение

Много написано о том, как снимать грибы с блока. Кто-то пишет срезать, кто-то выкручивать, кто-то раскачивать. Я за все способы кроме срезания с оставлением пеньков обычно я либо выкручиваю если гриб одиночный, либо вырываю предварительно раскачав в стороны, если грибы растут в связке или пучком. Единственное за чем надо следить, чтоб все, что тянется вместе с грибом, извлекалось тоже. Т. е., если у вас с грибом оторвался кусок мицелия, не нужно пытаться приделывать его обратно, думая что он прирастет и т. п.

Перед сушкой грибы нужно почистить от остатков субстрата. Это тоже делается как угодно, можно скоблить или отрезать, не важно. Главная цель чистый от субстрата гриб.

Когда я был еще новичком в грибоводстве, я сушил свой скудный урожай всякими усложненными способами закрытые боксы с осушителями, прокаленным рисом и прочим. В какой-то момент я понял абсурдность всех этих затей и купил себе многоярусную электросушилку. Отдал за нее 1200 рубасов и забыл про весь гиммор. Сушу в режиме 30С с обдувом встроенным вентилятором. Сушка протекает около 24-30

Глава: Сбор урожая

часов. Сухие до состояния печеньки грибы убираются в бумажный пакет из макдака и затем в целлофановый пакет.

Длительность хранения

Для хранения я не использую холодильник, не вижу в этом смысла. Нет, ну серьезно, если у вас много грибов, нет смысла морочаться на тему того, что из них что-то там пропадет в небольшом количестве.

Тем более опыт говорит, что даже пролежавшие полтора года в негерметичной деревянной коробочке, при комнатной температуре, грибы сохраняют свою пручесть на высоком уровне. Я хорошо запомнил день, когда нашел эту нычку и решил ее потестить. Кинул грибы на весы, дисплей отразили цифру 5.5гр. Прикинув, сколько они лежали (а они потемнели и легко крошились, чуть ли не в пыль), я подумал, что они потеряли свою силу чуть меньше чем полностью.

Не надеясь на их работоспособность, я растер их, вточил запив водичкой и пошел в Ашан купить что-нибудь на завтрак. Было чудное солнечное утро. Одев очечки потемнее я топал к магазу. Почти дойдя до пункта назначения, я начал ощущать знакомые шевеления восприятия. Оценив их, как незначительные, я вошел в Ашан и, взяв тележку для продуктов, стал лазить по рядам. В какой-то момент я ощутил, что потащило меня очень неслабо. В отделе сыров я понял, что забрало меня не по-детски: прилавки дышали, а надписи на ценниках никак не собирались в читаемые. Самого меня прилично штормило, и люди от меня стали шарахаться.

Оценив ситуацию, я понял, что тележка с продуктами мне больше нафиг не нужна, и одна только мысль о том, что мне придется стоять в очереди на кассу и расплачиваться с кассиром казалась мне нереальной затеей.

В ушах появился нарастающий гул, в котором можно было разобрать десятки разных голосов, но было ощущение того, что все они говорят на разных, непонятных мне языках. Атмосфера начала давить, людские массы огибаюшие меня со своими тележками и корзинами сливались в один потребительский поток, невероятно толстая тетя заорала справа от меня, но такое чувство что прямо мне в ухо: "Возьми-ка Кока Колы!" Слева от меня еще более громадный дядя, судя по всему ее муж, с остервенением начал загружать в свою тележку 2 упаковки колы по 6-ть 2-литровых бутылок. В один момент мне стало душно, я прикинул сколько это семейство пьет этой гадости, понял откуда весь их жир. Мне стало противно, в один момент мне в нос ударил удушливый запах пота, доносящийся от толстого мужика с Кока Колой. К горлу поступил ком, и меня затошнило.

"Надо валить отсюда" – пронеслось в голове. Резко сорвавшись с места, я двинул к выходу, сдерживая рвотные позывы. Я рвал из Ашана, как праведник-натурал рвал бы из Садома и Гаморы.

Вырвавшись на улицу я сделал несколько цикл глубоких вдохов-выдохов, заметил что тошнота отступила. В этот момент я оценил глубину трипа, я смотрел на плитку которой выложена территория перед торговым центром и не мог уцепиться вниманием ни за

Глава: Сбор урожая

одну деталь покрытия. Незатейлевый, обычно естественный узор на плитке жил своей собственной жизнью. В какой то момент мне казалось, что мой рост увеличиваеся, в другой вроде как уменьшается. Пытаясь стабилизировать изображение, я всматривался в пол. Тут я почувствовал некоторое неудобство, какое-то давящее чувство сзади. Я оглянулся и увидел компанию ребяток, стоящих неподалеку и с весельем меня разглядывающих. Тут мне пришло в голову, что я создаю нереальное палево, стоя чуть наклонившись над полом и втыкая в плитку, слегка водя головой пытаясь рассмотреть узоры на плитке. Я понял, что кто-то где-то ошибся, и лежащие долго грибы не так уж сильно теряют в активности. Быстро прикинув расклад при котором я точнул 5.5 сухими и пошел в Ашан, мне стало очень смешно. Тут мои мысли перескочили на то, что я до сих пор стою на том же месте и втыкаю, только уже не на плитку, а на компанию ребяток. Причем ребятки уже отсмеялись и начали поёрзывать, не понимая что там у меня в голове на тему их компании вертится.

Я развернулся и пошел прочь от этого места. По дороге я завис на лавочке одной из малолюдных алеек.

Пару раз меня неслабо выкидывало из этого мира в другие. Трип вышел более чем хорошим и сильным. Вывод, который я сделал на практике, таков: если грибы сохранили сухость и хранились меньше 1.5 лет, не стоит думать что они ослабли или не активны. Будьте аккуратны!

Глава: Сбор урожая

Снятие спорового отпечатка

Хорошо когда есть принты, и плохо когда их нет. Я хорошо помню время, когда у меня не было принтов, и как я рвал жопу, что бы разжиться посадочным материалом. Первый мой принт пришел мне от пользователя с ником BT5, за что ему моя благодарность. Увы, не суждено было вырасти грибам из этого принта (а точнее из присланной половинки принта). Неумеренный энтузиазм и кривые руки сделали свое черное дело, и я вернулся в ту точку, с которой начинал. Второй принт пришел ко мне не посредством данного форума, а окольными путями через знакомых знакомых, моих знакомых. Подготовив все необходимое, я начал распечатывать принт, для соскабливания его в рюмку для изготовления споровой взвеси. То что я обнаружил внутри неаккуратно скомканой фольги, очень сильно удивило меня и расстроило. Там была непонятная каша из спор и какой-то мерзко пахнущей слизи. Естественно не имея больше ничего, я на удачу загнал все это в шприц и инокулировал зерно. Естественно все было очень быстро и феерично просрано. Потом я попытался два раза заказать споры из-за бугра, но увы буржуины наеб...ли нашего брата, и ничего не пришло. Принт я так и не получил, но зато приобрел замечательного друга с которым в последствии был до его смерти. Пользователь Unambo (забавно если прочитать его ник наоборот то получиться obmanU, как он любил говорить "обману наоборот", и реально он был очень честным и порядочным человеком) согласился встретиться со мной на одной из станций метро, и передал мне банку сена, обросшего мицелием. Это была Камбоджа, и это были первые грибы, которые выросли в моих на то время кривых руках. Первые принты, которые я делал, не отличались продуманностью и дизайном, сейчас я назвал бы их уебищ..ыми.

Сейчас я понимаю, что принт помимо того, что должен содержать споры, должен быть еще чистым, грамотно снятым, удобным для извлечения с него спор, с умом запакованным и обязательно подписанным.

Для снятия отпечатков я использую фольгу для гриля, она толстая, крепкая, с ней удобно работать как до снятия принтов, так и при извлечении спор для своих нужд.

и для снятия одного-двух отпечатков.

1. Из толстой фольги вырезаете полосу, шириной примерно на 3 см больше диаметра шляпки гриба, а длиной как две ширины. Те для шляпки гриба диаметром 5 см размер прямоугольника фольги будет 8х16 см.

2. Готовим емкость с крышкой. Я использую емкость как от монотуба. У нее есть крышка и ее площадь достаточна для снятия достаточного количества отпечатков. Емкость протереть спиртом изнутри.

3. Ватным тампоном на гладкой поверхности протираем с обоих сторон полосы фольги. Протирать надо с нажимом, чтоб тщательно разгладить полоски фольги, они должны быть идеально ровные.

4. На внутреннюю часть перевернутой крышки разложить полоски фольги, еще раз протереть их спиртом и накрыть емкостью.

Теперь, когда для снятия принтов все готово, нужно выбрать плодовое тело. Есть много различных теорий на тему того, с каких плодовых тел нужно брать отпечатки. Одни говорят, что берите с самых больших грибов, другие говорят, берите с грибов 3-й волны, типа там самые "спелые" споры, кто-то вообще советует не морочатся и снимать с любого гриба. Кто-то снимает споры с только-только раскрывшихся шляп, а кто-то ждет пока поля шляпки не выгнуться вверх. Лично я придерживаюсь мнения о том, что чем более молодой мицелий, и чем жирнее принт тем лучше. Поэтому рекомендую брать для принтов грибы с первой волны, и раскрывшиеся до состояния когда спороносные пластины еще не выпячиваются за край шляпки. Т. е., если удалить ножку прямо рядом со шляпкой и положить шляпку на поверхность, она будет лежать опираясь на свои края, а пластины при этом не будут касаться поверхности. Это позволит во-первых снизить количество всяких бонусов снаружи (т. к. под шляпку ничего не залетит в процессе спороношения), а во-вторых сконцентрирует споры в один красивый отпечаток, и ничего за края шляпки не повылетает.

5. Снимите выбранный гриб с субстранного блока, уприте шляпку в чистую поверхность. Протертой спиртом бритвой (я использую бритвы типа рапира, как для советских бритвенных станков) аккуратно срежте ножку под самой шляпкой, так чтоб оставшийся "пенек" не выступал за уровень краев шляпки если ее положить спороносными пластинами вниз.

6. Чистым пинцетом аккуратно возьмите шляпку и положите ее на одну из подготовленных полосок фольги, так чтоб она занимала примерно середину половины полоски. Идея в том, что полоска будет сложена вдвое, и по центру одной из частей будет распологаться принт.

7. Повторите с другими шляпками.

8. Теперь, когда все шляпки разложены на полосках фольги, спрысните слегка из пуливелизатора ёмкость, которой накроете все это. Накройте и забудьте на 12 часов.

Вопрос, зачем прыскать емкость водой? Все очень просто. Я думаю, многие сталкивались с тем, что с отличных грибов получаются жидкие отпечатки или же они вообще не сыпят споры на носитель. Происходит это потому, что сыпать споры гриб может только при достаточной влажности. Как только гриб теряет связь с блоком, а шляпка теряет связь с ножкой, шляпка становится очень предрасположена к высыханию. Помните о том, что колонии мицелия образующие плодовое тело являются живыми и для "работы" им нужна повышенная влажность. Попробуйте и убедитесь в том, что при спороношении на носитель, увлажнение воздуха серьезно повышает эффективность процесса. Те кто видели мои принты, смогут подтвердить, что принты даже с небольших шляпок очень жирные. И могут быть использованы многократно.

9. Когда время прошло, приготовьте иголочку, протертую спиртом и откройте емкость.

Глава: Снятие спорового отпечатка

10. Подцепляя иголочкой край шляпки аккуратно подкиньте ее так чтоб она улетела с фольги не смазав принт.

11. Проделав это со всеми шляпками, закройте емкость и дайте принтам подсохнуть минут 10.

Это делается для того, чтобы остаточная влага не стала причиной порчи принта при хранении (там может даже вырасти слизь).

12. Сложите полоску фольги пополам по широкой стороне, прогладьте пальцем сгиб

13. Загните на одну сторону края полоски по сторонам, которые до складывания пополам были длинными на 0.5 см. Прогладьте сгибы

14. Загните на другую сторону оставшийся незапечатанным край.

15. Принт готов, осталось убрать его на хранение в такую же полоску фольги, но большего калибра и подписать.

Как наверное бросается в глаза, полученные таким способом отпечатки не являются стерильными, они являются просто полученными в относительно чистых условиях. При переносе в шприц для инокуляции зерна я использую гентамицин 1мл на 10мл воды. Этого достаточно для того, чтоб не было косяков. При инокуляции агара, естественно шансы занести ненужную бяку повышаются, но там совсем другой принцип работы. Культура переносится чистыми кусочками размером с рисовое зернышко, и в самом начале роста. Стандартная выбраковка чашек в прямых руках обычно не превышает 15%. Скажу еще, что получить стерильные отпечатки целый гимморой, и технически это сложно. А еще сложнее сохранить их стерильность при хранении.

Принты на бумаге

Зашел тут на олечке разговор за принты на бумаге. Мол, не нравится мне фольга, хочу принты на бумаге. Как ее стерилизовать?

Я ответил: "утюгом блеа!" – смешно, не спорю. Но тем не менее, метод обкатанный. Правда, оставленный в прошлом, так как на бумагу давно не снимал. Итак, делаем стерильную бумагу для принтов.

Берешь лист обычный из принтера. Нарезаешь его под отпечатки. Потом берешь еще 2 листа и склеиваешь их по краям тонким скотчем. Кладешь внутрь получившейся "папки" нарезанную бумагу для принтов. Заклеиваешь точно так же скотчем. Получается почти герметичный конверт.

Потом кладешь на ровную твердую поверхность и хуячишь на максимуме утюгом с попутным пропариванием струей пара. Пара минут и стерильная бумага под принты готова.

Глава: Снятие спорового отпечатка

Контаминанты

Любой грибовод со стажем скажет вам, что за свою жизнь выкинул много киллограммов зерна и прочих субстратов. Это нормально, и не стоит по этому поводу расстраиваться и опускать руки. Даже у супер махровых грибоводов проеб в 10-15% является нормой. Все зависит от потенциальной сложности и рисковости операции. Самый большой процент факапа стоит за такими операциями как g2g (инокуляция зерна на зерно) и агаровые трансферы.

Процент потерь тем больше, чем более масштабны объемы вашего хобби. Большие объемы субстрата требуют перемены подхода к грову, одно дело вы работаете с субстратом большой ложкой протертой спиртом, и совсем другое дело, когда у вас в руках садовые вилы или совковая лопата. Объем потенциальных претендентов на поедание пары кубов вашего чудесного компоста естесственно будет выше. А процесс создания условий для пастеризации таких объемов субстрата будет сложнее.

Но вернемся к небольшим объемам. Хорошая новость в том, что тут можно добиться практически полного отсутствия проблем с конкурентными организмами. Другая новость, для этого придется применять актуальные технические решения, в том числе описанные в этой книге.

Необходимо так же очень хорошо и полной грудью вкурить в жизнь грибов. Нужно пробовать поставить себя на место грибов. Понять, как они растут, питаются, размножаются и как все это вяжется с условиями их обитания.

Многие вещи мне подсказали сами грибы, задачей сессии было узнать о жизни грибов, которые я вкушаю. Во время сессии меня сопровождала полностью обросшая банка мицелия. Очень сильный опыт, рекоммендую. Рассматривайте их и общайтесь с ними вопросами в уме, эмпатически. Попробуйте отождествить себя с ними, побыть ими, побывать там, где они растут.

Конкуренция за ресурсы в мире микроорганизмов требует опредененных особенностей размножения. Оно должно быть быстрым, а количество производимого потомства высоким. И на деле так оно и есть. Чем проще организм, тем быстрее его жизненный цикл. Соответственно, низшие грибы всегда будут расти быстрее, чем высшие. Кубенсис, естественно, относится к высшим грибам, а конкуренты: некоторые к высшим (но более простым), некоторые к низшим. Задача культиватора создать условия, при которых создается фора, для того чтоб его подопечные успели занять субстрат первыми.

Стерильность того же зерна в банке не является абсолютной величиной. Со временем она падает, какая бы хорошая барьерная защита не стояла. Хорошая новость в том, что банки с защитой описанной в этой книге позволяют держать напор контаминатов, как минимум 8 недель (если только зараза не была внесена в банку самим оператором).

Глава: Контаминанты

Скорость размножения у конкурентов поистине велика, те, кто уже имел неудачные опыты, по достоинству оценили то, как бодро колонизирует банку триходерма или ниггер. Эх, такие бы показатели скорости кубам...

Многие простейшие грибы попросту не образуют плодовых тел. Допустим триходерма, относящаяся к роду гифомицетов. Они образуют кондиеносцы (особые вертикальные выросты из мицелия) с которых происходит раскидывание их спор (кондиев). На их формирование уходит мало времени, а спороношение обильное. В закрытом пространстве и при повышенной температуре триходерма распространяется со скоростью лесного пожара. Особенно этому способствует наличие в субстрате областей с анаэробными условиями. При анаэробных условиях в субстрате образуется ряд органических кислот, являющихся для триходермы самой нямкой.

Триходерма

На примере триходермы становится понятно, что правы были полководцы, говоря: "Знай своего врага". Имея представление о конкурентах, легче с ними бороться.

В природе триходерма является почвенной бактерией, а соответственно занести ее с покровным слоем содержащим землю очень просто. При недостаточной стерилизации кейсинга шансы завести себе нового "друга" очень велики. Если в субстрат добавлен буффер с основной реакцией, например гипс, это естественным образом препятствует появлению триходермы (в разумных пределах, конечно же).

При первых же признаках появления триходермы не без сожаления выкидывайте кейк, а то пространство в котором он стоял, подвергайте тщательнейшему санированию с применением самых жестких методов. Доместос в помощь! Никогда не ждите пока она размножится, выкидывайте СРАЗУ! Этот вид производит множество очень мелких и живучих спор. Однажды поплодоносив в вашем парнике, она может стать причиной длинной полосы разочарований от заражения ею. Если вы все еще используете парник с керамзитом или перлитом, то либо замените их на новые, либо замочите старый в растворе доместоса или иной хлорсодержащей жидкости.

Если вы используете парники или монотубы с фильтрами, все это тоже обработать хлоркой, а фильтры обязательно замените на новые.

Никогда не открывайте банки пораженные триходермой там где происходит гров. Для утилизации пораженного зерна сначала приоткройте банку и залейте ее горячей водой, только после этого можно начинать вытряхивать ее в унитаз. Это же правило распространяется на любую зараженную банку. Спороносящие организмы распростроняются главным образом по воздуху, заливая банку водой, вы осаживаете споры и они не разлетаются по ванной или туалету. Естественно небольшая их часть один

Глава: Контаминанты

фиг вылетает, поэтому старайтесь быть при вытряхивании по минимуму одеты (споры цепляются на одежду в большом количестве), а сразу после удаления банки вымойте руки по локоть антибактериальным мылом.

Анаэробные условия для контаминантов

Во многих руководствах и постах пользователей можно встретить упоминания о том, что во время колонизации грибам практически не нужен свежий воздух. Это не совсем так, и есть огромная разница, между повышенным содержанием углекислого газа и отсутствием кислорода.

Для понимания этой разницы нужно попробовать поставить себя на место грибов. Большинство любимых нами грибов проводит свой жизненный цикл в верхних слоях плодородного слоя земли. Обычно глубина их обитания это примерно до 15 сантиметров вглубь. Все что глубже не имеет необходимых условий для их роста.

В зависимости от компонентов образующих плодородный слой почвы его аэрация будет различной, и естественно будет ухудшаться с увеличением глубины.

Условием для плодоношения кубенсиса является появление постоянного воздухообмена.

Под постоянным воздухообменом я понимаю организацию одновременного притока кислорода и отвода углекислого газа. Для стадии колонизации организация оттока углекислого газа не нужна, а вот приток кислорода необходим. Теперь, надеюсь, разница понятна. Т. к. углекислый газ тяжелее воздуха, он стелется по поверхности субстрата, и остается в банке или контейнере, даже если отверстие воздушного фильтра будет большим, поэтому не страшно, если дырка для вентиляции банки будет хоть 3 сантиметра в диаметре, страшно если она будет меньше 8мм. Естественно, чем больший объем субстрата используется, тем больше ему требуется кислорода. И если речь идет о контейнере на 3 литра, то одним отверстием в 8мм как в крышке банки, не обойтись. Помимо того, что воздух нужен грибам для роста, он нужен так же для предотвращения создания анаэробных условий, при которых развитие патогенной микрофлоры будет вопросом короткого промежутка времени.

Особенно актуален и критичен вопрос притока кислорода при колонизации, при использовании синтетических субстратов на основе кокосового волокна. Т. к. фракция его довольно мелкая, а способность удерживать воду высока, для обеспечения достаточной аэрации слой субстрата не должен быть толще 15 см (лучше и того меньше), а вентиляционные отдушины достаточного размера. Естественно, инкубация должна проходить там, где воздухообмен свободный, иначе от отдушин не будет толку.

Отсутствие анаэробных зон в субстрате является одним из важных факторов, которые частично решают проблемы контаминации многими видами бяк.

Глава: Контаминанты

Записки испытателя природы

Удивительная коллекция

Опыт «Отпечаток спор»

Поиск по сайту

Последние новости

Галюциногенные виды грибов

Грибы спор отпечаток

Набор гровера. Инструменты, препараты и т.д.

Изготовление отпечатка.

Изготовление споровой взвеси.

Подготовка банок.

Подготовка субстрата.

Инокуляция субстрата.

Уход за банками.

Подготовка парника.

Выращивание мицелия в жидкой среде.

2 часть

Слоеное тесто на пиве Слоеное тесто на пиве с растительным маслом

Оладьи из печени Печеночные оладьи без

Морковный суп-пюре Морковный суп-пюре с картофелем и сливками